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TECHNICAL ARTICLES
更新時間：2019-12-19
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氯霉素檢測試劑盒
使用說明書
（酶聯免疫法）
1 原理及用途
本試劑盒采用間接競爭ELISA方法檢測水產組織、畜禽組織、肝臟、蛋類、蜂蜜、牛奶及飼料等樣本中的氯霉素藥物（Chloramphenicol，CAP），試劑盒由預包被偶聯抗原的酶標板、辣根酶標記物、抗體、標準品及其他配套試劑組成。檢測時，加入標準品或樣本溶液，樣本中的氯霉素藥物和酶標板上預包被偶聯抗原競爭抗氯霉素藥物抗體，加入酶標記物后，用TMB底物顯色，樣本吸光度值與其所含氯霉素藥物含量成負相關，與標準曲線比較即可得出樣本中氯霉素藥物的殘留量。
2 技術指標
2.1 試劑盒靈敏度：0.05ppb(ng/ml)
2.2 反應模式：25℃，30min～30min～15min
2.3 檢測下限：
組織、肝臟、蜂蜜、牛奶……………0.025ppb
蛋類……………………………………0.1ppb
尿液、血清、腸衣、飼料、奶粉……0.05ppb
2.4 交叉反應率：
氯霉素 …………………………………100%
甲砜霉素、氟甲砜霉素………………＜0.1%
2.5 樣本回收率：
組織、肝臟……………………………85%±20%
蜂蜜、腸衣……………………………85%±25%
牛奶、飼料……………………………75%±25%
尿液、血清……………………………70%±20%
3 試劑盒組成
酶標板……………………………96孔
標準液：各1ml
0ppb、0.05ppb、0.15ppb、0.45ppb、1.35ppb、4.05ppb
高標準液（紅蓋）：100ppb………1ml
酶標記物（紅蓋）…………………11ml
抗體工作液（藍蓋）………………5.5ml
底物液A（白蓋）……………………6ml
底物液B（黑蓋）……………………6ml
終止液（黃蓋）………………………6ml
20X濃縮洗滌液（白蓋）……………40ml
2X復溶液（黃蓋）…………………50ml
說明書………………………………1份
4 需要的器材和試劑
4.1 儀器：酶標儀、打印機、均質器 、氮氣吹干裝置、振蕩器、離心機、刻度移液管、天平（感量0.01g）
4.2 微量移液器：單道20µl-200µl，100µl-1000µl、多道300µl
4.3 試劑：乙酸乙酯、正己烷、乙腈、醋酸鈉、醋酸
、亞硝基鐵氰hua鉀（K2Fe(CN)5(NO)?2H2O）、葡萄糖苷酸酶、硫酸鋅（ZnSO4·7H2O）
5 樣本前處理
5.1 樣本處理前須知：
實驗器具必須潔凈并使用一次性吸頭，以避免污染干擾實驗結果。
5.2 配液：
配液1：0.36M亞硝基鐵氰hua鉀溶液（牛奶、奶粉樣本）
11.9g亞硝基鐵氰hua鉀加去離子水至100ml溶解。
配液2：1.04M硫酸鋅溶液（牛奶、奶粉樣本）
29.8g硫酸鋅加去離子水至100ml溶解。
配液3：0.1M pH4.8醋酸鈉緩沖液（尿液樣本）
2.4g醋酸鈉加去離子水500ml溶解，加1.2ml醋酸混勻。
配液4：乙腈-水溶液
V乙腈:V水=84:16
配液5：復溶液
將2×復溶液用去離子水2倍稀釋，用于樣本的復溶，復溶液在4℃環境可保存一個月。
5.3 樣本前處理步驟：
5.3.1 組織、魚、蝦、肝臟樣本處理方法
1）稱取均質后的樣本3±0.05g于50ml離心管中，先加入3ml去離子水振蕩混勻，再加入6ml乙酸乙酯振蕩2分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體2ml在50-60℃下氮氣吹干；
3）用1ml正己烷溶解干燥的殘渣，再加入0.5ml復溶液，混合30秒，室溫4000轉/分離心5分鐘；
4）去除上層有機相，取下層水相50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：0.5 檢測下限：0.025ppb
5.3.2 血清、血漿樣本處理方法
1）取1ml血清或血漿至離心管中，加入2ml乙酸乙酯振蕩1分鐘，室溫4000轉/分離心5分鐘，或靜置使水相與有機相分離；
2）取全部上層液體在50-60℃下氮氣吹干；
3）用1ml正己烷溶解干燥的殘渣，再加入1ml復溶液，混合30秒，室溫4000轉/分離心5分鐘；
4）去除上層有機相，取下層水相50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：1 檢測下限：0.05ppb
5.3.3 尿液樣本處理方法
1）取2ml尿液至離心管中，加入0.1M pH4.8醋酸鈉緩沖液0.5ml混合，加40ul葡萄糖苷酸酶，混勻，37℃水解2小時以上（或過夜）；
2）將上述溶液恢復至室溫后加入8ml乙酸乙酯振蕩1分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘，取4ml上層液體在50-60℃下氮氣吹干；
3）用1ml復溶液溶解干燥的殘渣，混勻；
4）取50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：1 檢測下限：0.05ppb
5.3.4 蜂蜜樣本處理方法
1）取2±0.05g蜂蜜于離心管中，用4ml去離子水溶解，加入4ml乙酸乙酯振蕩2分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體2ml在50-60℃下氮氣吹干；
3）用0.5ml復溶液溶解干燥的殘渣，混勻；
4）取50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：0.5 檢測下限：0.025ppb
（檢測下限0.025ppb，定量下限0.1ppb，因某些樣本有干擾建議以0.1ppb作為陽性判定值）
5.3.5 腸衣樣本處理方法
1）腸衣經清洗后均質，稱取均質后的樣本1±0.05g于50ml離心管中，加入10ml乙酸乙酯振蕩2分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體5ml在50-60℃下氮氣吹干；
3）用1ml正己烷溶解干燥的殘渣，再加入0.5ml復溶液，混合30秒，室溫4000轉/分離心5分鐘；
4）去除上層有機相，取下層水相50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：1 檢測下限：0.05ppb
5.3.6 牛奶樣本處理方法
1）將牛奶樣本15℃4000轉/分離心10分鐘，去除上層脂肪，取5ml去脂肪奶樣于50ml離心管中，加250ul 亞硝基鐵氰hua鉀溶液（配液1）振蕩混合30秒，加250ul 硫酸鋅溶液（配液2）振蕩混合30秒，15℃4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體2.2ml（相當于2ml鮮奶）于另一離心管中，加入4ml乙酸乙酯振蕩2分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘；
3）取上層液體2ml在50-60℃下氮氣吹干；
4）用0.5ml復溶液溶解干燥的殘渣，混勻；
5）取50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：0.5 檢測下限：0.025ppb
（檢測下限0.025ppb，定量下限0.05ppb，因某些樣本有干擾建議以0.15ppb作為陽性判定值）
5.3.7 奶粉樣本處理方法
1）取2±0.05g奶粉于50ml離心管中，用10ml去離子水溶解，加入1ml 亞硝基鐵氰hua鉀溶液（配液1）和1ml 硫酸鋅溶液（配液2）振蕩混合，15℃4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體3.6ml（相當于0.6g奶粉）于另一離心管中，加入6ml乙酸乙酯振蕩5分鐘，室溫4000轉/分離心10分鐘；
3）取上層液體4ml在50-60℃下氮氣吹干；
4）用0.4ml復溶液溶解干燥的殘渣，混勻；
5）取50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：1 檢測下限：0.05ppb
（檢測下限0.05ppb，定量下限0.15ppb，因某些樣本有干擾建議以0.15ppb作為陽性判定值）
5.3.8 蛋類樣本處理方法
1）取3±0.05g均質的蛋類樣本于50ml離心管中，加9ml乙腈-水溶液振蕩混合2分鐘，15℃4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體3ml于另一離心管中，加入3ml去離子水，再加4.5ml乙酸乙酯振蕩1分鐘，15℃4000轉/分離心10分鐘；
3）取全部上層液體在50-60℃下氮氣吹干；
4）用1ml正己烷溶解干燥的殘渣，再加入2ml復溶液，混合30秒，室溫4000轉/分離心5分鐘；
4）去除上層有機相，取下層水相50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：2 檢測下限：0.1ppb
（檢測下限0.1ppb，定量下限0.3ppb）
5.3.9 飼料樣本處理方法
1）取2±0.05g均質的飼料于50ml離心管中，用2ml去離子水溶解，再加入6ml乙酸乙酯振蕩2分鐘，15℃4000轉/分離心10分鐘；
2）取上層液體3ml載50-60℃下氮氣吹干；
3）用1ml正己烷溶解干燥的殘渣，再加入1ml復溶液，混合30秒，室溫4000轉/分離心5分鐘；
4）去除上層有機相，取下層水相50μl進行分析。
樣本稀釋倍數：1 檢測下限：0.05ppb
6 酶聯免疫試驗步驟
將所需試劑從4℃冷藏環境中取出，置于室溫平衡30min以上, 洗滌液冷藏時可能會有結晶需恢復到室溫以充分溶解，每種液體試劑使用前均須搖勻。取出需要數量的微孔板及框架，將不用的微孔板放入自封袋，保存于2-8℃。
實驗開始前，用去離子水將20×濃縮洗滌液按20倍稀釋成工作洗滌液。
6.1 編 號：將樣本和標準品對應微孔按序編號，每個樣本和標準品做2孔平行，并記錄標準孔和樣本孔所在的位置。
6.2 加樣反應：加標準品或樣本50µl/孔到各自的微孔中，然后加抗體工作液50µl/孔，輕輕振蕩5秒混勻，25℃避光反應30分鐘。
6.3 洗 滌：將孔內液體甩干，用工作洗滌液250µl/孔充分洗滌5次，每次間隔30秒，后用吸水紙拍干（拍干后未被清除的氣泡可用干凈的槍頭刺破）。
6.4 加酶反應：加酶標記物100µl/孔，25℃避光反應30分鐘。
6.5 洗 滌：同上
6.6 顯 色：加底物液A 50µl/孔，再加底物液B 50µl/孔，輕輕振蕩5秒混勻，25℃避光顯色15分鐘。
6.7 終 止：每孔加入終止液50µl，輕輕振蕩混勻，終止反應。
6.8 測吸光值：用酶標儀于450nm處測定每孔吸光度值（建議用雙波長450/630nm）。測定應在終止反應后10分鐘內完成。
7 結果分析
7.1 百分吸光率的計算
標準液或樣本的百分吸光率等于標準液或樣本的百分吸光度值的平均值（雙孔）除以di一個標準液（0ppb）的吸光度值，再乘以100%，即
百分吸光度值（%）＝ | A | ×100% |
A0 |
A—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
A0—0ppb標準溶液的平均吸光度值
7.2 標準曲線的繪制與計算
以標準液百分吸光率為縱坐標，對應的標準液濃度（ppb）的對數為橫坐標，繪制標準液的半對數曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標準曲線中，從標準曲線上讀出樣本所對應的濃度，乘以其對應的稀釋倍數即為樣本中待測物的實際濃度。
若利用試劑盒專業分析軟件進行計算，更便于大量樣本的準確、快速分析。
8 注意事項
8.1 室溫低于25℃或試劑及樣本沒有回到室溫（25℃）會導致所有標準的OD值偏低。
8.2 在洗板過程中如果出現板孔干燥的情況，則會出現標準曲線不成線性，重復性不好的現象。所以洗板拍干后應立即進行下一步操作。
8.3 混合要均勻，洗板要*，在ELISA分析中的再現性，很大程度上取決于洗板的一致性。
8.4 在所有孵育過程中，用蓋板膜封住微孔板，避免光線照射。
8.5 不要使用過了有效期的試劑盒，不要交換使用不同批號試劑盒中的試劑。
8.6 顯色液若有任何顏色表明變質，應當棄之。0標準的吸光度值小于0.5個單位（A450nm< 0.5 ）時，表示試劑可能變質。
8.7 反應終止液有腐蝕性，避免接觸皮膚。
9 貯藏及保存期
儲藏條件：試劑盒于2-8℃保存，避免冷凍。
保 質 期：該產品有效期為1年，生產日期見包裝盒。
當前位置：
